Badanie kału jest jednym z najtańszych i najbardziej informatywnych badań w gastroenterologii, ponieważ to, co opuszcza organizm w stanie nieniestrawionym, dokładnie wskazuje, gdzie zawiodło trawienie lub wchłanianie. Tłuszcz w kale wskazuje na trzustkę, która nie dostarcza wystarczającej ilości lipazy, lub na uszkodzoną błonę śluzową jelit; nieniestrawione białko wskazuje na to samo; natomiast cukry, które powinny zostać rozłożone i wchłonięte w jelicie cienkim, pojawiają się w kale, gdy brakujeenzymu takiego jak laktaza. Żaden z tych wyników nie wymaga do wykrycia skomplikowanego sprzętu. Każda klasa składników odżywczych ma test kolorymetryczny, który jest używany od ponad wieku: odczynnik Fehlinga tworzy ceglastoczerwony osad w obecności cukru redukującego, jod daje barwę niebiesko-czarną ze skrobią, Sudan IV wybarwia kropelki lipidów na czerwono, a miedź w środowisku zasadowym barwi się na fioletowo w obecności wiązań peptydowych. W tym laboratorium wykonasz wszystkie cztery testy na dwóch próbach jednocześnie – próbce N od osoby z prawidłowym trawieniem oraz próbce P od pacjenta – i na podstawie różnicy między obiema kolumnami wyników określisz, których klas składników odżywczych pacjent nie trawi prawidłowo. Trzy z tych testów wykonuje się w studzienkach płytki mikrotytracyjnej; test Fehlinga wymaga ogrzewania, dlatego przeprowadza się go w probówkach umieszczonych w łaźni wodnej na płycie grzejnej.
Cele edukacyjne
Zapoznanie się ze środowiskiem laboratoryjnym
- Zidentyfikuj płytkę mikrotitracyjną, statyw do probówek, pipety, pipetę automatyczną (lub zakraplacz), płytę grzejną z mieszadłem magnetycznym, termometr cyfrowy oraz pojemnik na odpady, i określ rolę każdego z nich.
- Pracuj z dwoma próbkami jednocześnie bez ich wzajemnego zanieczyszczania i czyść szklaną pałeczkę po każdym mieszaniu.
Postępowanie z materiałem biologicznym
- Próbkę stolca należy traktować jako potencjalnie zakaźną: rękawice przez cały czas, zakaz pobierania pipetą ustami, nadmiar odczynnika do pojemnika na odpady zamiast do zlewki.
- Płyta wielodołkowa, w której znajdował się materiał biologiczny, jest utylizowana, a nie myta i ponowie używana, ze względu na ryzyko zanieczyszczenia krzyżowego, trudności w całkowitym usunięciu mikroskopijnych pozostałości biologicznych i chemicznych (takich jak białka, DNA czy toksyny) oraz zagrożenie biologiczne dla personelu laboratoryjnego. Jednorazowe płytki zapewniają powtarzalność i wiarygodność wyników badań, eliminując zmienność, którą mogłoby powodować niedokładne czyszczenie.
Obsługa próbek i układ testu
- Odlać 10 mL każdej próbki do oznaczonych probówek i umieścić krople każdej z nich w trzech wgłębieniach oznaczonych tą samą etykietą.
- Przygotuj płytkę tak, aby każdą studzienkę można było później zidentyfikować, i zarejestruj układ przed dodaniem jakiegokolwiek odczynnika.
Działanie łaźni wodnej z grzałką
- Napełnij i przygotuj łaźnię wodną z mieszadłem, doprowadź ją do temperatury zadanej, a następnie zamocuj w niej probówkę za pomocą zacisku tak, aby jej zawartość – a nie łaźnia – osiągnęła temperaturę wymaganą dla reakcji.
- Zweryfikuj temperaturę wewnątrz rurki za pomocą termometru cyfrowego, zamiast polegać na ustawieniu płyty grzejnej, i wyjaśnij różnicę między tymi dwoma odczytami.
Zastosowanie czterech jakościowych testów na obecność składników odżywczych
- Podaj, przed dodaniem czegokolwiek, co wykrywa każdy odczynnik i jaki kolor jest uznawany za wynik pozytywny.
- Dodaj odczynniki biuretowe w odpowiedniej kolejności — najpierw wodorotlenek sodu, a następnie siarczan miedzi — i wyjaśnij, dlaczego zasada musi znajdować się tam przed miedzią.
Odczytywanie, rejestrowanie i interpretowanie wyników
- Zapisz kolor wszystkich ośmiu wyników w takiej postaci, w jakiej zostały zaobserwowane, a dopiero potem zdecyduj o wyniku pozytywnym lub negatywnym względem określonych kryteriów.
- Wyciągnij wniosek na temat pacjenta na podstawie wzorca we wszystkich czterech testach i powiedz, czego ten wzorzec nie potwierdza.
Protokół
Przygotowanie próbek kału
- Za pomocą pipety odmierz 10 mL normalnej próbki kału.
- Wlej 10 ml próbki do probówki N.
- Za pomocą zakraplacza umieść 5 do 10 kropli normalnej próbki stolca w każdej z 3 studzienek oznaczonych następująco:
- Studzienka N (Lugol)
- Studzienka N (Sudan IV)
- Studzienka N (Biuret)
- Powtórz kroki od 1 do 3 dla próbki kału pacjenta (P), napełniając probówkę i 3 odpowiadające jej studzienki.
Identyfikacja prostych węglowodanów
- Napełnij 400 ml wody z kranu do zlewki o pojemności 500 ml.
- Włóż mieszadło magnetyczne do zlewki.
- Ustaw zlewkę na płycie grzewczej i ustaw temperaturę na 75°C. Poczekaj, aż temperatura zostanie osiągnięta.
- Włącz mieszadło magnetyczne (przycisk po lewej).
- Za pomocą pipety dodać 10 ml Fehling A do probówki N.
- Za pomocą pipety dodać 10 ml Fehling B do probówki N.
- Zmieszaj zawartość probówki N ruchem okrężnym.
- Umieść zacisk uniwersalny na lewej statywie, nad zlewką o pojemności 500 ml przygotowaną w kroku 1.
- Zamocuj probówkę N w zacisku uniwersalnym nad środkiem zlewki.
- Za pomocą termometru cyfrowego zweryfikuj, czy w probówce została osiągnięta temperatura powyżej 70°C.
- Weź probówkę N i odłóż ją na jej pierwotne miejsce na stojaku na probówki.
- Zmieszać zawartość probówki przez kilka sekund potrząsając nią szklanym pręcikiem.
- Za pomocą pipety dodać 10 ml Fehling A do probówki P.
- Za pomocą pipety dodaj 10 ml Fehling B do probówki P.
- Wymieszaj zawartość probówki P ruchem okrężnym.
- Zamocuj probówkę P w zacisku uniwersalnym nad środkiem zlewki.
- Za pomocą termometru cyfrowego zweryfikuj, czy w probówce została osiągnięta temperatura powyżej 70°C.
- Weź probówkę P i odłóż ją na jej pierwotne miejsce na stojaku na probówki.
- Zmieszać zawartość probówki przez kilka sekund potrząsając nią szklanym pręcikiem.
- Obniż temperaturę płyty grzewczej do 15°C.
- Wyłącz mieszadło magnetyczne.
Obserwacje reakcji kontrolnej znajdują się w tabeli wyników.
Identyfikacja złożonych węglowodanów
- Za pomocą zakraplacza dodaj 5 do 10 kropli płynu Lugola do każdej z 2 studzienek oznaczonych następująco:
- Studzienka N (Lugol)
- Studzienka P (Lugol)
- Wylej nadmiar z zakraplacza do pojemnika na odpady.
- Wymieszaj zawartość szklanym pręcikiem. Ostrzeżenie: pamiętaj, aby dokładnie czyścić szklany pręcik po każdym mieszaniu, aby uniknąć zmieszania substancji!
Identyfikacja lipidów
- Za pomocą zakraplacza dodaj 5 do 10 kropli Sudanu IV do każdej z 2 studzienek oznaczonych następująco:
- Studzienka N (Sudan IV)
- Studzienka P (Sudan IV)
- Wylej nadmiar z zakraplacza do pojemnika na odpady.
- Wymieszaj zawartość za pomocą bagietki szklanej.
Identyfikacja białek
- Za pomocą zakraplacza umieść 1 kroplę wodorotlenku sodu (NaOH) w każdej z 2 studzienek oznaczonych następująco:
- Studzienka N (Biuret)
- Studzienka P (Biuret)
- Wylej nadmiar z zakraplacza do pojemnika na odpady.
- Za pomocą pipety pobierz 1 pełną pipetę (10 mL) siarczanu miedzi (CuSO4).
- Za pomocą pipety odmierz 1 mL siarczanu miedzi (CuSO4) do studzienek N i P (Biuret).
- Opróżnij nadmiar z pipety do pojemnika z odpadami.
- Wymieszaj zawartość za pomocą bagietki szklanej.
Obserwacje znajdują się w tabeli wyników.
- Pozytywny wynik na obecność cukrów prostych objawi się ceglastoczerwonym osadem (Cu2O) w probówce (reakcja Fehlinga).
- Wynik pozytywny na obecność węglowodanów złożonych spowoduje purpurowe zabarwienie (jod – kompleks skrobi) w studzience (próba Lugola).
- Pozytywny wynik na obecność lipidów objawi się czerwonym zabarwieniem (kompleks Sudan IV – lipidy) w studzience (test Sudanu IV).
- Pozytywny wynik obecności białek spowoduje purpurowe zabarwienie (kompleks biuretowy) w studzience (próba biuretowa).
Przewidywane wyniki
Każdy z czterech testów odpowiada na jedno pytanie i każdy ma pozytywny kolor, który trzeba znać, zanim dodany zostanie odczynnik. Pierwsza tabela określa, czego się szuka i co uznaje się za wynik.
| Test | Odczynnik | Co to wykrywa | Pozytywny wynik | Wynik negatywny |
|---|---|---|---|---|
| Proste węglowodany | Odczynnik Fehlinga A + B, ogrzany powyżej 70 °C | Cukry redukujące: glukoza, fruktoza, maltoza, laktoza | ceglastoczerwony osad Cu2O w rurce | Głęboki błękit odczynnika miedziowego pozostaje niezmieniony i nic się nie osadza |
| Węglowodany złożone | Jod Lugola 2 % | Skrobia, a w mniejszym stopniu glikogen i dekstryny | Niebiesko-czarne lub ciemnofioletowe zabarwienie w dołku | Tylko żółto-brązowy do czerwono-brązowego samego odczynnika |
| Lipidy | Czerwień Sudanu IV | Neutralne tłuszcze i kwasy tłuszczowe występujące w postaci kropel | Wyraźnie wybarwione na czerwono do czerwono-pomarańczowego kropelki | Delikatny, równomiernie rozprowadzony róż bez plamistych kropel |
| Białka | Biuret: NaOH, a następnie CuSO4 | Wiązania peptydowe, czyli białka i peptydy składające się z trzech lub więcej reszt | Fioletowe do mauwowego zabarwienie w dołku | Blady błękit roztworu miedzi lub brak jakiejkolwiek zmiany |
Druga tabela przedstawia osiem wyników wraz z wywołaniem, które każdy z nich obsługuje.
| Test | Próbka N (normalna) — zaobserwowano | Połączenie | Próbka P (pacjent) — zaobserwowano | Połączenie |
|---|---|---|---|---|
| Odczynnik Fehlinga, proste węglowodany | Po ogrzaniu nie wytrąca się osad; w tabeli wyników odnotowano jedynie wykrycie próby Fehlinga | Negatywny | Po podgrzaniu w probówce obserwuje się osad | Pozytywny |
| płyn Lugola, złożone węglowodany | Głęboki czerwonobrązowy, kolor skoncentrowanego roztworu jodu | Negatywny — nie czarno-niebieski | Bursztynowy do średnio brązowego, jaśniejszy niż dobrze N | Negatywny — nie czarno-niebieski |
| Sudan IV, lipidy | Blado nakrapiany róż w całej studzience, brak wyraźnych zabarwionych kropli | Negatywny | Blady, nakrapiany róż, bardzo bliski studni N i bez wyraźnych zaplamionych kropel | Negatywny |
| Biuret, białka | Prawie bezbarwny, bardzo blady, złamany różem biały | Negatywny | Fioletowa studzienka z wyraźnym jasnoniebieskim osadem, niedająca się pomylić z N | Pozytywny |
Wniosek, który popierają wyniki. Próbka N dała cztery wyniki ujemne: nic wykrywalnego nie uniknęło trawienia, co jest oczekiwanym wynikiem w przypadku zdrowego jelita. Próbka P dała dwa wyraźne wyniki dodatnie – cukry redukujące i białko – w tych samych testach, które dla próbki N dały wyniki ujemne, przy użyciu tych samych odczynników z tych samych butelek, więc różnica wynika z właściwości próbki, a nie z metody. Niestrawione białko i niewchłonięty cukier pojawiające się razem w stolcu wskazują raczej na ogólną niewydolność trawienia w jelicie cienkim niż na brak jednego konkretnego enzymu — na niewydolność trzustki, w której brakuje jednocześnie kilku enzymów trawiennych, lub na uszkodzenie błony śluzowej jelita, które skraca czas i zmniejsza powierzchnię dostępną do wchłaniania. Wynik ten nie pozwala na określenie nazwy choroby; wskazuje jedynie, które procesy uległy zaburzeniu, a lekarz powinien następnie przeprowadzić badania, które mierzą, a nie tylko wykrywają.
Dlaczego studzienka dodatnia wykazuje zarówno zabarwienie, jak i osad. Dwa sygnały w studzience P to dwa różne związki tej samej miedzi. Fioletowy odcień cieczy to sam kompleks biuretowy: w zasadowym roztworze utworzonym przez wodorotlenek sodu jon Cu2+ jest chelatowany przez atomy azotu sąsiednich wiązań peptydowych, a ten kompleks miedziowo-peptydowy jest rozpuszczalny, dzięki czemu zabarwia całą studzienkę równomiernie, zamiast opadać na dno. Osadem jest wodorotlenek miedzi(II), powstający wszędzie tam, gdzie jon Cu2+ napotka jony wodorotlenkowe, zanim napotka wiązanie peptydowe: Cu2+ + 2 OH− → Cu(OH)2(s), bladoniebieskie ciało stałe. Wodorotlenek miedzi(II) należy do najmniej rozpuszczalnych spośród pospolitych wodorotlenków, więc gdy obecne wiązania peptydowe pobiorą już swoją część miedzi, nadmiar opuszcza roztwór w postaci tego ciała stałego. Obie obserwacje opowiadają zatem tę samą historię dwa razy: białko wiąże część miedzi jako rozpuszczalny fioletowy kompleks, a wodorotlenek wiąże resztę w postaci ciała stałego.
Dlaczego do przeprowadzenia reakcji Fehlinga potrzebne jest ciepło i czym jest ten czerwony osad. Odczynnik Fehlinga to miedź(II) utrzymywana w roztworze przez winian w silnym roztworze alkalicznym, dlatego jest dostarczany w dwóch butelkach i mieszany dopiero w momencie użycia. Cukier redukujący zawiera wolną grupę aldehydową, która w gorącym roztworze alkalicznym ulega utlenieniu do grupy karboksylanowej, podczas gdy miedź(II) ulega redukcji do miedzi(I), która jest nierozpuszczalna i wytrąca się w postaci ceglastoczerwonego tlenku miedzi(I): RCHO + 2 Cu2+ + 5 OH− → RCOO− + Cu2O(s) + 3 H2O. Reakcja przebiega w temperaturze pokojowej zbyt wolno, by można ją było zaobserwować, i właśnie dlatego stosuje się łaźnię wodną: płyta grzejna jest ustawiona na 75 °C, a protokół wymaga temperatury powyżej 70 °C wewnątrz rury, ponieważ tam zachodzi reakcja. Zwróć uwagę na to, co test obejmuje, a czego nie. Glukoza, fruktoza, maltoza i laktoza redukują odczynnik; sacharoza nie, ponieważ oba jej węgle anomeryczne są zablokowane wiązaniem glikozydowym, więc stolec zawierający sacharoza da wynik negatywny. Test mówi, że obecny jest cukier redukujący, ale nigdy – który konkretnie.
Dlaczego jod w połączeniu ze skrobią zmienia kolor na niebiesko-czarny?. Roztwór Lugola zawiera jod rozpuszczony w jodku potasu w postaci jonu trijodku, I3−. Amylaza, nierozgałęziona frakcja skrobi, zwija się w helisę, której wnętrze jest na tyle szerokie, że mieści łańcuch jonów trijodku, a powstały w ten sposób kompleks przeniesienia ładunku pochłania promieniowanie w całym widmie światła widzialnego, nadając mu znany niebiesko-czarny odcień. Kolor ten jest zatem odzwierciedleniem kształt polysacharydu, a nie tylko na jego obecności: amylopektyna i glikogen, które są silnie rozgałęzione i nie mogą tworzyć długich helis, dają natomiast barwę czerwono-brązową, a dekstryny — częściowo rozłożona skrobia — dają wynik pośredni. Dlatego też wynik czerwono-brązowy należy interpretować ostrożnie. Tak właśnie wygląda sam odczynnik, więc wynik ten jest oceniany jako ujemny, ale student powinien wiedzieć, że częściowo strawiona skrobia również może dawać odbarwienie czerwono-brązowe i że test traci czułość właśnie tam, gdzie biologia staje się interesująca.
Dlaczego Sudan IV i biuret w ogóle działają. Sudan IV to lizoochrom: barwnik, który nie wchodzi w żadną reakcję chemiczną, ale jest wielokrotnie bardziej rozpuszczalny w tłuszczu niż w wodzie, przez co przedostaje się do każdej obecnej kropelki lipidowej i zabarwia ją na czerwono-pomarańczowo, podczas gdy otaczająca ją woda pozostaje niemal bezbarwna. Wynik dodatni oznacza zatem pojedyncze czerwone kropelki, a nie jednolita zmiana koloru, a interpretacja wyników polega raczej na poszukiwaniu struktury niż odcienia. Reakcja Biureta stanowi test o odwrotnym charakterze: jest to prawdziwa reakcja koordynacyjna, w której Cu2+ w roztworze o silnie zasadowym odczynie ulega chelatowaniu przez atomy azotu co najmniej dwóch sąsiednich wiązań peptydowych, tworząc fioletowy kompleks o maksimum absorpcji w pobliżu 540 nm. Wynikają z tego dwie konsekwencje. Wolne aminokwasy i dipeptydy nie reagują, więc test wykrywa raczej wiązania peptydowe niż azot; a ponieważ intensywność fioletowego zabarwienia jest proporcjonalna do stężenia wiązań peptydowych, jest to jedyny z czterech testów, który można bezpośrednio przekształcić w oznaczenie ilościowe za pomocą spektrofotometru i krzywej wzorcowej. Kolejność dodawania ma znaczenie: zasada musi być obecna przed miedzią, w przeciwnym razie miedź wytrąca się w postaci wodorotlenku zamiast tworzyć kompleks.
Podsumowanie zadania według zakresu ocen
Klasy 9–10
- Skupienie: cztery klasy składników odżywczych, odczynnik wykrywający każdą z nich oraz zasada zapisywania koloru przed jego zinterpretowaniem.
- Aktywności: przygotuj płytkę i opisz ją; przeprowadź cztery testy na obu próbkach; przed podjęciem jakichkolwiek decyzji zapisz zaobserwowany kolor wszystkich ośmiu wyników w tabeli podobnej do tabeli 2; oceń każdy wynik jako pozytywny lub negatywny zgodnie z kryteriami określonymi w protokole; w jednym zdaniu określ, której próbki P nie udaje się strawić, oraz wymień środki ostrożności obowiązujące podczas postępowania z próbką kału.
Klasa 11
- Skupienie: zasady chemiczne leżące u podstaw każdego koloru oraz warunki niezbędne do przebiegu każdej reakcji.
- Aktywności: zapisz równanie reakcji Fehlinga i określ, która substancja ulega utlenieniu, a która redukcji; wyjaśnij, dlaczego temperatura w probówce musi przekraczać 70 °C oraz dlaczego odczyt wewnątrz probówki różni się od wartości zadanej płyty grzejnej; wyjaśnij, dlaczego sacharoza daje wynik ujemny w teście Fehlinga, podczas gdy laktoza daje wynik dodatni; wyjaśnij powstawanie niebiesko-czarnego zabarwienia w kontekście helisy amylozy i trijodku; wyjaśnij, dlaczego Sudan IV nie wymaga reakcji, aby zadziałać; oraz uzasadnij kolejność dodawania dwóch odczynników biuretowych.
Klasa 12 / Poziom akademicki
- Skupienie: krok od jakościowego badania przesiewowego do pomiaru diagnostycznego oraz interpretacja wzorca wyników.
- Aktywności: opisać, w jaki sposób reakcja Biureta przekształca się w ilościowy test na obecność białka, uwzględniając krzywą kalibracyjną, zastosowaną długość fali oraz powód, dla którego absorbancja jest proporcjonalna do stężenia wiązań peptydowych; zaproponować kontrole pozytywne i negatywne, których brakuje w niniejszym protokole, oraz określić, co każda z nich wykluczałaby; wyjaśnić, dlaczego jednoczesne uzyskanie wyników pozytywnych w testach Fehlinga i Biureta wskazuje raczej na ogólną niewydolność trawienną niż na brak jednego enzymu, oraz wymienić dalsze badania, które pozwoliłyby odróżnić niewydolność trzustki od uszkodzenia błony śluzowej; ocenić czułość i swoistość każdego z czterech badań jako testu przesiewowego; oraz wyjaśnić, dlaczego wynik ujemny nie pozwala wykluczyć danego schorzenia.
Podstawowe wyposażenie laboratorium
Instrumenty
- Probówki o pojemności 50 ml (2 szt., oznaczone literami N i P)
- Stojak na probówki
- Kroplomierze, 1 ml (8)
- Pipeta
- Zlewka (500 ml, napełniona 400 ml wody z kranu)
- Mikropłytka (płytka z dołkami, wykorzystano 6 dołków)
- Płyta grzejna, ustawiona na 75 °C
- Mieszadło magnetyczne i mieszadełko magnetyczne
- Termometr cyfrowy
- Szklane pręty
- Stojak i uniwersalny zacisk
- Ręcznik papierowy
- Kosz
Produkty
- Prawidłowa próbka stolca (N)
- Próbka kału pacjenta (P)
- Odczynnik Fehlinga, roztwory A i B (po 10 ml każdego na probówkę)
- Roztwór jodu Lugola 2 %
- Roztwór Sudanu IV
- Odczynnik biuretowy — wodorotlenek sodu, NaOH 2,5 M
- Odczynnik biuretowy — siarczan miedzi(II), CuSO4 0,0094 M
- Woda z kranu (400 ml do kąpieli)
